選擇熒光定量PCR儀時的兩個的誤區(qū)：

　　誤區(qū)一：儀器通道越多越好

　　隨著PCR技術(shù)的成熟運(yùn)用，多重擴(kuò)增越來越熱鬧，儀器也不能幸免。從開始推出的單通道發(fā)展到如今各個廠家都推出4通道、5通道甚至6通道，眼花繚亂的選擇讓人無所適從，就有人一不小心走進(jìn)了“通道越多越好”的誤區(qū)。

　　

　　在使用有些廠家5通道的熒光定量儀時，為了確保實(shí)驗結(jié)果的精確性和準(zhǔn)確性都要在實(shí)驗中使用ROX（一種熒光染料）或?qū)Ｓ玫腞eferencedye，這些熒光染料都必須單獨(dú)使用一個檢測通道。這樣以來，真正能檢測多重PCR熒光信號的有效通道只有4個，而且使用校正染料可能會增加后期的使用成本。有的熒光定量PCR的檢測通道是只為自已廠家的專用的熒光染料或試劑開放的，有效檢測通道也絕非像宣傳資料中宣稱的那么多。在購買前確認(rèn)熒光定量PCR儀器的有效檢測通道尤為重要，不能單單只聽宣傳。

　　

　　考慮多重?zé)晒舛縋CR的通道數(shù)的時候也應(yīng)該從實(shí)驗室實(shí)際情況出發(fā)，多重PCR并非人人適用、人人可用，因為多重PCR必須要對退火溫度進(jìn)行優(yōu)化，在引物設(shè)計的時候就可能開始考慮能不能放在一個反應(yīng)體系內(nèi)進(jìn)行反應(yīng)，不同的反應(yīng)需要的退火溫度不同，不合適的退火溫度會降低擴(kuò)增效率，放大非特異性擴(kuò)增，甚至擴(kuò)增不出來，它使實(shí)驗指數(shù)倍的復(fù)雜化了。臨床上因為有試劑廠家專門針對某些疾病開發(fā)研制的多重檢測試劑盒，才需要用到3、4、5通道的檢測；科研用的熒光定量因為設(shè)計探針麻煩，基本上都用染料法，基本上單通道就能滿足。

　　

　　誤區(qū)二：Real-TimePCR儀無需梯度功能

　　對于使用染料法的定量PCR反應(yīng)，雖然有各種各樣的PCR引物設(shè)計軟件或者經(jīng)驗公式計算熔解溫度（Tm值），但運(yùn)用的公式不同、引物序列不同，Tm值的差異會很大。引物的熔解溫度決定了退火溫度。而且模版中堿基的組合千變?nèi)f化，對于特殊片斷，經(jīng)驗公式得到的數(shù)據(jù)不一定能得出準(zhǔn)確的結(jié)果，退火溫度細(xì)微的差異對結(jié)果都可能產(chǎn)生決定性的影響，因而“摸條件”一度是讓人很頭疼的問題。梯度PCR的出現(xiàn)部分解決了一些問題——在反應(yīng)過程中每個孔的溫度控制條件可以在zhi定范圍內(nèi)按照梯度變化，根據(jù)結(jié)果，一步就可以摸索出適合的反應(yīng)條件。不單退火溫度，連變性溫度和延伸溫度都可以優(yōu)化——對于多種聚合酶混合酶擴(kuò)增如Invitrogen、Clontech、Promega的多數(shù)高保真Taq酶來說這個非常重要，因為Taq和校正酶的反應(yīng)溫度可能有顯著差異，優(yōu)化延伸溫度就顯得很重要。