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一、基本原理
　　一定量的微生物，接種在適合的新鮮液體培養(yǎng)基中，在適宜的溫度下培養(yǎng)，以菌數(shù)的對(duì)數(shù)作縱坐標(biāo)，生長時(shí)間作橫坐標(biāo)，做出的曲線叫生長曲線。一般可分為延遲期、對(duì)數(shù)期、穩(wěn)定期和衰亡期四個(gè)時(shí)期。不同的微生物有不同的生長曲線，同一種微生物在不同的培養(yǎng)條件下，其生長曲線也不一樣。因此，測(cè)定微生物的生長曲線對(duì)于了解和掌握微生物的生長規(guī)律是很有幫助的。
　　測(cè)定微生物生長曲線的方法很多，有血球計(jì)數(shù)法、平板菌落計(jì)數(shù)法、稱重法、比濁法等。本實(shí)驗(yàn)采用比濁法測(cè)定，由于細(xì)菌懸液的濃度與混濁度成正比，因此，可利用光電比色計(jì)測(cè)定菌懸液的光密度來推知菌液的濃度，并將所測(cè)得的光密度值（OD值）與其對(duì)應(yīng)的培養(yǎng)時(shí)間作圖，即可繪出該菌在一定條件下的生長曲線?，F(xiàn)已有直接用試管就可以測(cè)定OD值的光電比色計(jì)（圖Ⅶ-10），只要接種一支試管，定期用它測(cè)定，便可做出該菌的生長曲線。
二、器材
　　培養(yǎng)18—20小時(shí)的大腸桿菌培養(yǎng)液，盛有5ml肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基的大試管12支；
　　72型或72．1型分光光度計(jì)，自控水浴振蕩器或搖床，無菌吸管等。
三、操作步驟
　　1．編號(hào)
　　取11支盛有肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基的大試管，用記號(hào)筆標(biāo)明培養(yǎng)時(shí)間，即0、1．5、3、4、6、8、10、12、14、16、20小時(shí)。
　　2．接種
　　用1ml無菌吸管，每次準(zhǔn)確地吸取0．2ml大腸桿菌培養(yǎng)液，分別接種到已編號(hào)的11支肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基大試管中，接種后振蕩，使菌體混勻。
　　3．培養(yǎng)
　　將接種后的11支試管置于自控水浴振蕩器或搖床上，37℃振蕩培養(yǎng)。分別在0、1．5、3、4、6、8、10、12、14、16、20小時(shí)將編號(hào)為對(duì)應(yīng)時(shí)間的試管取出，立即放冰箱中貯存，zui后一同比濁測(cè)定光密度值。
　　4．比濁測(cè)定
　　以未接種的肉膏蛋白胨培養(yǎng)基作空白對(duì)照，選用540—560nm波長進(jìn)行光電比濁測(cè)定。從zui稀濃度的菌懸液開始依次進(jìn)行測(cè)定，對(duì)濃度大的菌懸液用未接種的肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基適當(dāng)稀釋后測(cè)定，使其光密度值在0．1—0．65以內(nèi)，記錄OD值時(shí)，注意乘上所稀釋的倍數(shù)。
四、實(shí)驗(yàn)報(bào)告