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技術(shù)文章

蛋白質(zhì)的濃度測定

發(fā)布時(shí)間:2014-2-28

檢查試管是否干燥、潔凈,若否,則將其洗凈并置于干燥箱內(nèi)120℃烘干。

 

1.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

    取普通清潔試管7支,標(biāo)號(hào),1號(hào)管為空白,2~7管用微量注射器分別加1.0mg/mL的牛血清白蛋白(即標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì))溶液10,20,40,60,80,100mL。各管均用0.015mol/L PBS緩沖液補(bǔ)充到100mL(即0.1mL),詳見表6-1。混勻待用。

表13-1標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

管號(hào)

標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)(mL)

緩沖液(mL)

總體積(mL)

1

0

100

100

2

10

90

100

3

20

80

100

4

40

60

100

5

60

40

100

6

80

20

100

7

100

0

100

2.將待測蛋白配成合適濃度

    另取3支清潔試管,編號(hào)8、9、10,用微量注射器按表6-2操作,將待測蛋白配成系列濃度。

 

表13-2待測蛋白的稀釋

管號(hào)

待測蛋白質(zhì)(mL)

緩沖液(mL)

總體積(mL)

稀釋倍數(shù)

8

20

80

100

5

9

40

60

100

2.5

10

60

40

100

1.67

 

3.加入G250試劑

    各試管充分混勻后,用取樣器分別加入5.0mL考馬斯亮蘭G250試劑,每加完一管,立即混合(注意不要太劇烈,以免產(chǎn)生大量氣泡而難于消除)。

 

4.比色

    各管室溫靜置2~5min后,在分光光度計(jì)上測定595nm處的光吸收值A 595 ,空白對(duì)照為第1號(hào)試管,標(biāo)準(zhǔn)和待測蛋白樣同時(shí)比色。

 

    注意:不可使用石英比色皿(因不易洗去染色),只能使用玻璃比色皿,使用后立即用少量95%的乙醇潤洗,洗去顏色。

                          

5.制作標(biāo)準(zhǔn)曲線

    以標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)為橫座標(biāo)、吸光度值A 595 為縱座標(biāo)作圖,即得到一條標(biāo)準(zhǔn)曲線。

 

6.根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算待測蛋白濃度

    在標(biāo)準(zhǔn)曲線上,根據(jù)測出的待測樣品的A 595 值,查出試管中蛋白質(zhì)濃度,再按照計(jì)算公式:

待測蛋白質(zhì)的濃度(mg/mL)=查出的濃度×稀釋倍數(shù)

    計(jì)算出待測蛋白濃度。如樣品稀釋合理且操作得當(dāng),待測蛋白的三個(gè)數(shù)值應(yīng)具有同一性,取其平均值作為待測蛋白濃度。如某一光吸收值落在標(biāo)準(zhǔn)曲線線性范圍外,舍棄該點(diǎn)。

 

計(jì)算

管號(hào)

標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)(mL

緩沖液(mL

G-250試劑(mL)

每管中的蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)

光吸收值(A 595

 

標(biāo)

準(zhǔn)

1

0

100

5

0

 

2

10

90

5

0.1

 

3

20

80

5

0.2

 

4

40

60

5

0.4

 

5

60

40

5

0.6

 

6

80

20

5

0.8

 

7

100

0

5

1.0

 

 

 

管號(hào)

待測蛋白質(zhì)(mL

緩沖液(mL

G250試劑(mL)

A 595

查出的濃度(mg/mL)

稀釋倍數(shù)

待測蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)

待測蛋白

8

20

80

5

 

 

5

 

9

40

60

5

 

 

2.5

 

10

60

40

5

 

 

1.67

 

 

結(jié)果:待測蛋白質(zhì)的濃度為:         mg/mL

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